X-Gal與X-α-gal可以互相替換嗎?
3/25/2021 10:38:06 AM
X-Gal與X-α-gal可以互相替換嗎?X-Gal是E.coli β-半乳糖苷酶(LacZ)的反應(yīng)底物,而X-α-gal是酵母α-半乳糖苷酶(MEL1)的反應(yīng)底物。X-α-gal用作酵母雙雜交系統(tǒng)中藍白篩選的篩選標記。二者不可以互相替換。
X-α-Gal檢測酵母MEL1基因的激活。MEL1是GAL4酵母雙雜交系統(tǒng)的一個報告基因,編碼分泌型的α-半乳糖苷酶。該酶可水解無色的X-α-Gal底物并最終產(chǎn)生藍色產(chǎn)物。表達α-半乳糖苷酶的酵母菌落在含有X-α-Gal的培養(yǎng)基上顯藍色,即陽性的雙雜交作用。X-α-Gal可在培養(yǎng)基上直接檢測酵母雙雜交相互作用,利用此底物可以省去雙雜交體系中的β-半乳糖苷酶溶液和filter-lift assays;
X-Gal用于檢測β-半乳糖苷酶(LacZ)的活性。由于β-半乳糖苷酶不能分泌,需裂解酵母細胞后通過加入β-半乳糖苷酶溶液和filter-lift assays才能進行顯色。因此操作流程相對繁瑣。
攜帶MEL1基因的酵母菌株:Y2HGold、Y190、AH190、Y187、PG69-2A
1. X-α-gal 使用方法
一、涂布于預(yù)制平板:
1)溶解24 mg X-α-gal于6 mL DMF,終濃度為4 mg/ mL。
2)涂布200 μL(15 cm) 或者100 μL(10 cm)X-α-gal 儲存液于預(yù)制平板上;
3)置于37℃培養(yǎng)箱至液體被吸收(由于DMF揮發(fā)性低,最長可放4小時);
4) 將轉(zhuǎn)化細菌或酵母涂于平板上,于37℃或30℃培養(yǎng)直至藍色菌落出現(xiàn)。
二、直接加入瓊脂中:
1)溶解60 mg X-α-gal于3 mL DMF,終濃度為20 mg/ mL。
2)將已滅菌瓊脂培養(yǎng)基冷卻至50-55 ℃;
3)向上述培養(yǎng)基中加入20 mg/ mL X-α-Gal,比例為每升培養(yǎng)基中加入1 mL X-α-Gal溶液。
2. X-gal使用方法(filter-lift assays)
試劑準備
16.1 g/L Na2HPO4 · 7H2O
5.50 g/L NaH2PO4· H2O
0.75 g/L KCl
0.246 g/L MgSO4· 7H2O
調(diào)節(jié)pH 7.0,高溫高壓滅菌。可室溫保存。
20 mg/mL X-gal 儲液(5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside),溶于DMF,保存于-20。
100 mL Z buffer
1.67 mL X-gal 儲液
0.27 mL β-mercaptoethanol
實驗流程
1. 生長2-4天的新鮮單菌落; 用鉛筆在濾紙上 畫 8×8 的方格,每個方格放置一個新鮮培養(yǎng)的單菌落并記錄下編號;
2. 配制 Z buffer/X-gal 反應(yīng)液;
3. 在干凈平皿中鋪一張濾紙,用 Z buffer/X-gal 反應(yīng)液(2.5-5 mL)將濾紙浸濕;
4. 用鑷子另取一張無菌、干燥的濾紙,鋪在劃線培養(yǎng)的酵母菌表面,用鑷子輕輕滾壓,使菌轉(zhuǎn)移到濾紙表面(注:在濾紙上做好方位標記,以便識別菌種編號);
5. 當濾紙全部濕潤,用鑷子將鋪有菌落的濾紙放入液氮中速凍 30 sec,液氮需沒過菌落;
6. 取出濾紙,放置于一干凈平皿中使其室溫解凍;
7. 用鑷子將解凍的濾紙輕輕疊放在浸有反應(yīng)液的濾紙上(有菌的表面朝上),保證兩層濾紙間沒有氣泡;30°C,培養(yǎng)8 h,觀察X-gal染色情況。菌落變 為藍色的為陽性,超過 8 h 變藍,很有能是假陽性。
注意事項:
1. x-gal注意遮光保存。
2. 液氮冰凍菌的時候可以試試反復(fù)凍融,這樣會使細胞破碎的更加完全一些,便于染色液的滲透。
X-α-Gal檢測酵母MEL1基因的激活。MEL1是GAL4酵母雙雜交系統(tǒng)的一個報告基因,編碼分泌型的α-半乳糖苷酶。該酶可水解無色的X-α-Gal底物并最終產(chǎn)生藍色產(chǎn)物。表達α-半乳糖苷酶的酵母菌落在含有X-α-Gal的培養(yǎng)基上顯藍色,即陽性的雙雜交作用。X-α-Gal可在培養(yǎng)基上直接檢測酵母雙雜交相互作用,利用此底物可以省去雙雜交體系中的β-半乳糖苷酶溶液和filter-lift assays;
X-Gal用于檢測β-半乳糖苷酶(LacZ)的活性。由于β-半乳糖苷酶不能分泌,需裂解酵母細胞后通過加入β-半乳糖苷酶溶液和filter-lift assays才能進行顯色。因此操作流程相對繁瑣。
攜帶MEL1基因的酵母菌株:Y2HGold、Y190、AH190、Y187、PG69-2A
1. X-α-gal 使用方法
一、涂布于預(yù)制平板:
1)溶解24 mg X-α-gal于6 mL DMF,終濃度為4 mg/ mL。
2)涂布200 μL(15 cm) 或者100 μL(10 cm)X-α-gal 儲存液于預(yù)制平板上;
3)置于37℃培養(yǎng)箱至液體被吸收(由于DMF揮發(fā)性低,最長可放4小時);
4) 將轉(zhuǎn)化細菌或酵母涂于平板上,于37℃或30℃培養(yǎng)直至藍色菌落出現(xiàn)。
二、直接加入瓊脂中:
1)溶解60 mg X-α-gal于3 mL DMF,終濃度為20 mg/ mL。
2)將已滅菌瓊脂培養(yǎng)基冷卻至50-55 ℃;
3)向上述培養(yǎng)基中加入20 mg/ mL X-α-Gal,比例為每升培養(yǎng)基中加入1 mL X-α-Gal溶液。
2. X-gal使用方法(filter-lift assays)
試劑準備
- Z buffer
16.1 g/L Na2HPO4 · 7H2O
5.50 g/L NaH2PO4· H2O
0.75 g/L KCl
0.246 g/L MgSO4· 7H2O
調(diào)節(jié)pH 7.0,高溫高壓滅菌。可室溫保存。
20 mg/mL X-gal 儲液(5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside),溶于DMF,保存于-20。
- Z緩沖液/X-gal 溶液
100 mL Z buffer
1.67 mL X-gal 儲液
0.27 mL β-mercaptoethanol
實驗流程
1. 生長2-4天的新鮮單菌落; 用鉛筆在濾紙上 畫 8×8 的方格,每個方格放置一個新鮮培養(yǎng)的單菌落并記錄下編號;
2. 配制 Z buffer/X-gal 反應(yīng)液;
3. 在干凈平皿中鋪一張濾紙,用 Z buffer/X-gal 反應(yīng)液(2.5-5 mL)將濾紙浸濕;
4. 用鑷子另取一張無菌、干燥的濾紙,鋪在劃線培養(yǎng)的酵母菌表面,用鑷子輕輕滾壓,使菌轉(zhuǎn)移到濾紙表面(注:在濾紙上做好方位標記,以便識別菌種編號);
5. 當濾紙全部濕潤,用鑷子將鋪有菌落的濾紙放入液氮中速凍 30 sec,液氮需沒過菌落;
6. 取出濾紙,放置于一干凈平皿中使其室溫解凍;
7. 用鑷子將解凍的濾紙輕輕疊放在浸有反應(yīng)液的濾紙上(有菌的表面朝上),保證兩層濾紙間沒有氣泡;30°C,培養(yǎng)8 h,觀察X-gal染色情況。菌落變 為藍色的為陽性,超過 8 h 變藍,很有能是假陽性。
注意事項:
1. x-gal注意遮光保存。
2. 液氮冰凍菌的時候可以試試反復(fù)凍融,這樣會使細胞破碎的更加完全一些,便于染色液的滲透。